标本如何固定

标本固定可采用化学固定、物理固定、热固定等方法。不同的标本类型和待分析项需要选择不同的固定方法。

对于生物组织标本，常用的化学固定方法是用10%的中性缓冲福尔马林（paraformaldehyde）或乙醇（ethanol）进行固定。在固定前，要先将标本快速切碎或切片，以便固定剂能充分渗透到组织细胞中。化学固定可使细胞中的蛋白质交联，防止细胞膜破裂、细胞核变形或溶解，从而保持细胞和组织结构的完整性。

对于显微观察的标本，物理固定往往更适合。例如对于活体细胞的观察，可以将标本置于液态的琼脂中，或使用覆盖玻片对标本进行压平，使细胞得以自然展开。对于显微孔洞（如细胞膜）的观察，可使用冷冻切片或原位凝胶切片（即在制备切片时不移动标本）等方法进行物理固定。

热固定是用高温将标本固定在载玻片或标本架上。这种方法常见于电镜、红外光谱等分析领域。热固定可以保持标本的原貌，但也可能会对样品造成一定的热损伤。